Индукция и репарация ДР ДНК в нейронах головного мозга мышей при действии g-квантов 60Со. -диплом

Содержание
ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ……………………………………………….3
1. Центральная нервная система: физиология, структура и общие
принципы её функционирования………………………………………………...3
1.1. Общая характеристика строения головного мозга…………………………4
1.2. Структура и функции нервной ткани……………………………………….6
1.3. Структурная и функциональная организация гиппокампа
млекопитающих……………………………………………….…………………11
1.4. Структурная и функциональная организация клеток Пуркинье
млекопитающих………………………………………………………………….17
2. Значение и общая характеристика репарации повреждений ДНК………...18
2.1. Типы радиационно-индуцированных повреждений ДНК………………..21
2.2. Основные механизмы репарации повреждений ДНК…………………….25
2.3. Закономерности репарации in vitro………………………………………...28
2.5. Репарация ДНК в мозге животных………………………………………...33
2.4. Влияние ионизирующих излучений на функции центральной
нервной системы…………………………………………………………………35
3. Метод ДНК-комет…………………………………………………………….38
Список используемых источников……………………………………………..44
Приложение………………………………………………………………………46

Список используемых источников
1. Батуев А.С. Физиология высшей нервной деятельности и сенсорных систем [Текст] : учебник / А.С. Батуев. – 3-е изд. – СПб.: Питер, 2009. – 317 с.
2. Бельченко Л.А. Физиология человека: организм как целое [Текст] : учебно-методический комплекс / Л.А. Бельченко, В.А. Лавриненко. – Новосибирск : Сибирское университетское изд-во, 2004. – 229 с.
3. Жанатаев А.К., Дурнев А.Д., Оганесянц Л.А. Метод гель-электрофореза изолированных клеток (метод «ДНК-комет») в пищевой генотоксикологии // Хранение и переработка сельхозсырья. – 2007. № 1. – С. 15–20.
4. Смирнов В.М. Нейрофизиология и высшая нервная деятельность детей и подростков / В.М. Смирнов. – М.: Академия, 2000. – 400 с.
5. Смирнов В.М. Физиология сенсорных систем и высшая нервная деятельность / В.М. Смирнов, С.М. Будылина. – М. : Академия, 2003. – 304 с.
6. Физиология высшей нервной деятельности: хрестоматия: учебное пособие / Т.Е. Россолимо, И.А. Москвина – Тарханова, Л.Б. Рыбалов. – 3-е изд. стереотип. – М.; Воронеж : МПСИ: МОДЭК, 2007. – 336 с.
7. Цицерошин М.Н. Становление интегративной функции мозга / М.Н. Цицерошин, А.Н. Шеповальников. – СПб.: Наука, 2009. – 249 с.
8. Collins A.R. The comet assay for DNA damage and repair: principles, applications, and limitations // Mol. Biotechnol. – 2004. № 26 (3). – С. 249–61.
9. Omidkhoda A, Mozdarani H, Movasaghpoor A, Fatholah AA. Study of apoptosis in labeled mesenchymal stem cells with superparamagnetic iron oxide using neutral comet assay. Toxicol In Vitro. 2007; 21 (6). – Р. 119-126.
10. Thiebault C, Carriиre M, Milgram S, Simon A. Uranium Induces Apoptosis and Is Genotoxic to Normal Rat Kidney (NRK-52E) // Proximal Cells Toxicol Sci. – 2007. № 98 (2). – Р. 479–87.
11. Singh N.P. A Simple Method for Accurate Estimation of Apoptotic Cells. // Experimental Cell Research. – 2000. № 25. – Р. 328–337.
12. Alapetite C. The comet assay as a repair test for prenatal diagnosis of Xeroderma pigmentosum and trichothiodystrophy // J. Invest Dermat 1997. – 108. Р. 154–159.
13. Tronov V.A., Kramarenko I.I., Kozlova A.D. Sensitivity of human lymphocytes to genotoxic effect of n-methyl-n-nitrosourea: possible relation to gynecological cancers // Exp Oncol. – 2006; 28 (4). – P. 314–318.
14. Anuszewska E, Chłopkiewicz B, Gruber B, et al. Estimation of DNA damage and cytotoxicity of anthracycline analogs in human melanoma cells on early and late passages // Acta Pol. Pharm. – 2006; 63 (4). – P. 321–324.
15. Kopjar N., Milas I., Garaj-Vrhovac V. Alkaline comet assay study with breast cancer patients: evaluation of baseline and chemotherapy-induced DNA damage in non-target cells // Clin. Exp. Med. – 2006; 6 (4). – P. 177–90.
16. Kleiman N.J., Spector A. DNA single strand breaks in human lens epithelial cells from patients with cataract // Current Eye Res. – 1993. № 12. – Р. 423–431.
17. Hwang E.S., Bowen P.E. DNA damage, a biomarker of carcinogenesis: its measurement and modulation by diet and environment // Crit Rev Food Sci Nutr 2007. № 47 (1). – Р. 27–50.
18. Ostling O. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damage in individual mammalian cells // Biochem Biophys Res Comm. 2012. № 3. – Р. 291.
19. Olive P.L., Banбth J.P. The comet assay: a method to measure DNA damage in individual cells // Nat. Protoc. 2006. № 1 (1). – P. 23–29.
20. Tice R.R., Agurell E. Single cell gel Comet assay: guidelines for in vitro and in vivo genetic toxicology testing // Environ Mol Mutagen. – 2000. № 35. – P. 206.
21. Sauvaigo S, Bonnet-Duquennoy M, Odin F, et al. DNA repair capacities of cutaneous fibroblasts: effect of sun exposure, age and smoking on response to an acute oxidative stress // Br J Dermatol. – 2007. № 157 (1). – Р. 26–32.
22. Hartman A, Plappert U, Raddatz K. Does physical activity induce DNA damage // Mutagenesis. 1994. № 9. – Р. 269–272.
23. Wardman P., Rothkamm K., Folkes L.K. Radiosensitization by nitric oxide at low radiation doses. Radiat // Res. 2007. № 167 (4). – P. 475–484.